研究小组还通过CHANGE-seq评估了脱靶编辑的程度 , 结果显示 , 95%的Cas9诱导的切割是靶标特异性的 , 并且所有主要脱靶编辑位点都位于基因间或内含子区域 。
为了防止在在细胞中的脱靶编辑 , 研究团队等将驱动Cas9表达的CMV/SFFV启动子替换为B细胞特异性CD19启动子 。 除此之外 , 他们还将编码gRNA的元件转移到含HDRT的AAV中 , 这样只有同时转导了两种AAV的细胞才能被编辑 。 这种新设计在保持编辑效率和血清抗体水平的同时 , 显著降低了肝脏中的Cas9表达和非特异性切割 。
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脱靶切割分析显示了较高的安全性
总而言之 , 这项研究开发了一种实现HIV免疫的新方法——通过CRISPR技术直接编辑免疫球蛋白基因来重编程体液免疫 , 诱导免疫系统产生对抗HIV的广泛中和抗体——3BNC117 , 中和3BNC117敏感的HIV毒株 。
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研究模式图
当然 , 这项技术的实现还存在许多障碍:抗体滴度仍要更高、更稳定才能确保治疗效果和减少免疫接种次数;需要结合多种互补的广泛中和抗体(bNAbs)提高对HIV的免疫预防;在没有加强免疫的情况下 , 这些抗体反应是否持续尚不清楚;以及最重要的安全性问题 , 是否会引起不良免疫反应 , 是否会导致AAV染色体随机整合驱动的致癌事件 。
尽管如此 , 这项研究成果仍是令人兴奋 , 它表明直接基因编辑B细胞从而产生特异性广泛中和抗体(bNAbs)将成为缺乏有效疫苗的传染性疾病的潜在治疗方案 。 研究团队表示 , 预计在未来几年内 , 将能以这种方式生产治疗艾滋病、其他传染病和某些由病毒引起的癌症(如宫颈癌、头颈癌)的药物 。 (来源生物世界)
参考资料:
https://www.nature.com/articles/s41587-022-01328-9
https://www.nature.com/articles/s41587-022-01299-x返回搜狐 , 查看更多
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