在驯化过程中 , 我们发现避免非常高的细胞密度很重要 , 因为这会导致聚集现象 。 一般来说 , 我们将细胞密度维持在2.5×106个细胞/mL以下 。 细胞聚集体可能会降低转染效率并导致在放大生产规模中出现问题 。 重要的是 , 我们还确认了HEK293细胞也可以在具有类似的性能的HyCell?TransFx-H培养基中驯化和培养 。 由于SV40大T抗原的存在 , 我们讨论了AAV生产的HEK293T细胞在法规上的可接受性 。 因此在许多情况下应首选HEK293细胞 。
我们在ReadyToProcessWAVE?25中放大了rAAV5材料的生产规模 , 产生了高病毒滴度和高百分比的完整衣壳 , 而且工艺可放大并非常可靠 。 对生产rAAV5的rAAV2转染方案进行了验证 , 可以达到如下质粒纯化最佳标准:qPCR≥1×1013VG/LELISA≥1×1014VP/L完整衣壳百分比≥10%
在这些条件下完全符合rAAV5收获材料的所有标准 。
因此 , 我们认为本文描述的优化转染方案适用于多种AAV血清型 , 并且可以放大到生产临床级AAV载体所需的体积 。 尽管我们在本文中描述的是针对AAV2和AAV5的优化 , 但该策略也已成功用于AAV8和AAV9(目前正在进行中)(来源思拓凡)返回搜狐 , 查看更多
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